重組蛋白在大腸桿菌(E. coli)高效表達時,往往以不溶的、無活性的蛋白聚集體,即包涵體(inclusion body)的形式存在于細(xì)胞內(nèi)。必須從細(xì)胞內(nèi)分離出包涵體,采用高濃度變性劑(如7.0mol/L鹽酸胍、8.0mol/L脲)溶解包涵體,然后除去變性劑或降低變性劑的濃度,使包涵體蛋白得以復(fù)性,最后再用色譜法使目標(biāo)蛋白質(zhì)得到純化。其中包涵體蛋白的復(fù)性和純化是整個過程中的核心。
目前重組蛋白生產(chǎn)中普遍存在的問題是:
(1)復(fù)性效率低。傳統(tǒng)的復(fù)性方法稀釋法和透析法。稀釋復(fù)性法對樣品幾十倍,甚至上百倍的稀釋會使樣品的體積急劇增大,給后續(xù)的分離純化帶來很大的困難,醫(yī)學(xué)全在線搜集整,理m.payment-defi.com而且復(fù)性過程中需要較大的復(fù)性容器。透析法耗時較長,而且要多次更換透析溶液。這兩種方法的共同缺點是蛋白質(zhì)在復(fù)性過程中會發(fā)生聚集而產(chǎn)生大量沉淀,復(fù)性效率低,通常蛋白質(zhì)的活性回收率只有5~20%,而且復(fù)性后的蛋白質(zhì)溶液中含有大量的雜蛋白,需要進行進一步的分離純化。
(2)工藝路線煩瑣,生產(chǎn)周期長。在傳統(tǒng)的重組蛋白質(zhì)分離純化工藝中,大多采用經(jīng)典的軟凝膠分離介質(zhì),由于這種介質(zhì)的顆粒較大,分離效率較差,因此常常需要采用多種不同模式的色譜操作聯(lián)用對目標(biāo)蛋白質(zhì)進行純化,才能得到純度符合一定標(biāo)準(zhǔn)的目標(biāo)蛋白質(zhì)。醫(yī)學(xué)全在線搜集整,理m.payment-defi.com另外,這種色譜介質(zhì)的耐壓性很差,只能在流速較低的情況下進行操作,分離純化時間較長。分離純化步驟多和分離時間長使得蛋白質(zhì)的質(zhì)量回收率和活性回收率很低。而且在傳統(tǒng)的重組蛋白質(zhì)生產(chǎn)工藝中,蛋白質(zhì)的復(fù)性和純化是生產(chǎn)過程中兩個獨立的單元操作,也在很大程度上制約著生產(chǎn)效率。
(3)生產(chǎn)成本高,設(shè)備投資大。由于復(fù)性和分離純化分別單獨進行,而且分離純化步驟多,每一步都需要有與之配套的設(shè)備,致使設(shè)備投資大,生產(chǎn)成本高。隨著生產(chǎn)規(guī)模的增加,這種弊端會愈來愈嚴(yán)重。
1991年耿信篤教授首先將高效疏水相互作用色譜(HPHIC)用于變性蛋白的復(fù)性,很好的解決了上述問題,現(xiàn)已成功用于重組人干擾素-g(rhIFN-g)、重組人干擾素-a(rhIFN-a)、人粒細(xì)胞集落刺激因子(rhG-CSF)、重組人胰島素原(proinsulin)、重組牛朊病毒(prion)等重組蛋白以及溶菌酶和核搪核酸酶等標(biāo)準(zhǔn)模型蛋白的復(fù)性與同時純化中。目前,排阻色譜法、離子交換色譜法和親合色譜法也已用于蛋白質(zhì)的復(fù)性和同時純化中。與傳統(tǒng)的稀釋法及透析法比較,用色譜法進行蛋白復(fù)性的優(yōu)點是:
①在進樣后可很快除去變性劑;
②由于色譜固定相對變性蛋白質(zhì)的吸附,可明顯地減少、甚至完全消除復(fù)性過程中蛋白質(zhì)聚集體和沉淀的產(chǎn)生,從而提高蛋白質(zhì)復(fù)性的質(zhì)量和活性回收率;
③在蛋白質(zhì)復(fù)性的同時可使目標(biāo)蛋白質(zhì)與雜蛋白分離以達到純化的目的,使復(fù)性和純化同時進行;
④便于回收變性劑,以降低廢水處理成本。
簡言之,色譜法復(fù)性可以提高蛋白質(zhì)的活性和質(zhì)量回收率,將蛋白復(fù)性和純化集成在一步操作完成,縮短了操作步驟和生產(chǎn)時間,減少了設(shè)備投資,使生產(chǎn)成本大大降低,已經(jīng)引起了全世界范圍內(nèi)許多生化研究者和重組蛋白藥物生產(chǎn)廠家的關(guān)注。由于高效液相色譜(HPLC)分離效率高,往往在一步操作中便可得到純度符合要求的蛋白質(zhì),而且分離速度快,在應(yīng)用方面具有更大的優(yōu)勢。
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